1.7 噬菌体基因组测序和裂解酶基因的挖掘

提取噬菌体的基因组，送至上海派森诺生物科技有限公司进行基因组测序。使用PHAST软件和NCBI BLAST软件对噬菌体全基因组序列进行分析，挖掘潜在的裂解酶基因来进行深入研究。

1.8 噬菌体裂解酶的表达及纯化

1.8.1 裂解酶基因lysYNP1的克隆

根据获得的裂解酶基因序列设计引物，并在两条引物的5'端插入pET28a连接接头（如下划线所示）。F：5'-GGTACCCTCGAGGGATCCATGGCTAAGACTCAAGCAGAA-3'；R：5'-CTGCAGGTCGACAAGCTTTAACTCTTGAATGTCCCCCA-3'。PCR反应体系：上、下游引物各2 μL，噬菌体YNP1基因组2 μL，PrimeSTAR Max Premix（2）25 μL，ddH2O 19 μL。PCR反应条件：98℃预变性3 min；98℃变性10 s，55℃退火15 s，72℃延伸15 s，30个循环；72℃延伸5 min。反应结束后，将产物采用1%的琼脂糖凝胶电泳检测，并用胶回收试剂盒回收PCR产物。

1.8.2 表达载体的构建

利用Hieff Clone® Plus One Step Cloning Kit一步法快速克隆试剂盒构建裂解酶pET28a表达载体，方法如下：首先将pET28a进行酶切线性化处理，酶切体系：BamH I 1 μL、Hind III 1 μL、pET28a 3 μL、10×Buffer 5 μL、ddH2O 40 μL，30℃、15 min，37℃、20 min酶切；随后将1.8.1回收的裂解酶基因连接至线性化的pET28a载体，连接体系为：2×Hieff Clone Enzyme Premix 5 μL、酶切后pET28a质粒2 μL、回收的裂解酶基因1 μL、ddH2O 2 μL，50℃连接20 min。将连接产物转化至BL21感受态细胞，涂板，过夜培养，并将筛选到的阳性克隆送去测序。将比对成功的质粒，转化到大肠杆菌BL21。

1.8.3 裂解酶LysYNP1的表达

将构建好的裂解酶表达菌株按1∶100的比例接种于含有卡那抗性的LB液体培养基中，在37℃摇床200 rpm振荡培养至对数期（OD600约0.6）。然后加入IPTG至终浓度为1 mmol/L，25℃、120 rpm摇床过夜诱导表达。并于诱导前和诱导后各取菌液1 mL，诱导后的1 mL菌液进行破碎，破碎后的沉淀用1 mL的PBS重悬，分别取诱导前菌液、诱导后上清液、诱导后沉淀各50 μL，煮沸后进行10% SDS-PAGE电泳。剩余菌液于4℃、2796×g离心20 min，弃去上清液，25 mL PBS重悬后洗3次，加入25 mL PBS重悬后超声破碎，4℃条件下7157×g离心20 min后取上清液用0.45 μm滤膜过滤后获得裂解酶LysYNP1粗提液，于4℃保存。

1.8.4 裂解酶LysYNP1的活性检测以及裂菌谱的测定

现采用丹麦Biosense公司oCelloScope系统定量评估裂解酶活性。将不同浓度的裂解酶粗提液与过夜培养的宿主菌液混合加入检测板，系统自动监测并记录细菌浓度（生物量）的实时变化。通过比较加酶组与对照组（PBS）细菌生长/裂解曲线的差异，可量化裂解酶的杀菌动力学和裂解效率，并生成剂量-效应曲线。

2 结果

2.1 噬菌体的分离与鉴定

2.1.1 噬菌体分离及噬菌斑形态

污水样本过滤上清液与指示菌混合经双层琼脂平板法测定和纯化，37℃培养12h后，在平板上能形成明显噬菌斑。噬菌斑呈圆形、大而透明、边缘整齐（图1）。经双层琼脂平板法测定噬菌体效价为109 PFU/mL。

图1 噬菌体YNP1噬菌斑形态特征

2.1.2 噬菌体的电镜观察

纯化的噬菌体经磷钨酸负染后，在120 kV透射电镜下观察其形态（图2）。噬菌体的头部呈二十面体立体对称，头部直径约100 nm，含有收缩性尾部，尾部的末端具有清晰的尾丝，并且暴露出尾管，尾部长约125 nm，宽约25 nm。根据2012年国际病毒分类委员会第9次报告提出的噬菌体分类与命名标准，该噬菌体符合肌尾噬菌体科特征，命名为vB_SauM_YNP1。

图2 噬菌体YNP1电镜照片

2.2 噬菌体的生物学特性

2.2.1 裂菌谱的测定

通过平板裂解实验及斑点实验检测噬菌体对实验菌株的裂解效果。结果发现，该噬菌体对金黄色葡萄球菌菌株B52、05Q132、JY-1、JY-2、JY-3、JY-4和DL57-2具有极强的裂解效果，形成明显的裂菌圈。对大肠杆菌O157菌株Min27、K-12菌株MC1061以及猪链球菌HA9801和无乳链球菌ATCC13813均没有明显的裂解效果（表1）。

表1 噬菌体YNP1的裂解谱

菌株类型	菌株编号	双层琼脂平板实验	斑点实验
耐甲氧西林金黄色葡萄球菌（5株）	B52	-	+
	05Q132	-	+
	DL57-2	-	+
	361	-	+
	439	-	+
临床分离的多重耐药金黄色葡萄球菌（9株）	JY-1	-	+
	JY-2	-	+
	JY-3	-	+
	JY-4	-	+
	JY-5	-	+
	JY-6	-	+
	JY-7	-	+
	JY-8	-	-
	JY-9	-	-
临床分离多重耐药松鼠葡萄球菌	SH-1	-	+
临床分离多重耐药其他葡萄球菌	SH-2	-	+
临床分离多重耐药人葡萄球菌	SH-3	-	+
临床分离多重耐药鸡葡萄球菌	SH-4	-	+
大肠杆菌（2株）	Min27	-	-
	MC1061	-	-
无乳链球菌（1株）	ATCC13813	-	-
猪链球菌（1株）	HA9801	-	-
注：“+”：裂解性；“-”：不裂解

注：“+”：裂解；“-”：不裂解。

2.2.2 噬菌体的热稳定性测定

噬菌体在30℃~75℃水浴条件下作用1h后的滴度变化如图3A所示，在30℃~55℃时，噬菌体能保持活性，而随着温度升高，噬菌体的效价也会迅速下降，到60℃时噬菌体完全失活。

2.2.3 噬菌体的pH稳定性测定

噬菌体在pH2.0~13.0各培养1h后噬菌体的滴度变化如图3B所示，在pH4.0~10.0时，噬菌体能维持较好的活性，当pH过高或过低，噬菌体的滴度会明显下降。当pH为2和12时，噬菌体完全失活。表明该噬菌体具有良好的酸碱耐受性。

2.2.4 噬菌体对紫外线的敏感性

噬菌体经紫外线处理不同时间后，测定噬菌体效价。结果显示，在紫外线照射30min后，噬菌体效价急剧下降，随着时间的延长，噬菌体的存活率下降幅度变缓（图3C）。

2.2.5 噬菌体对氯仿的敏感性

噬菌体经不同比例的氯仿处理，孵育30min后检测噬菌体滴度。结果显示，噬菌体效价由4.60×109 PFU/mL下降到1.72×109 PFU/mL（图3D），表明该噬菌体对氯仿不敏感，即该噬菌体无囊膜。

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